Plasmidfast200
小量质粒DNA快速抽提试剂盒
保存条件:RNase A液4℃(或-20℃)保存,试剂盒其它部分室温保存,保质期1年。
技术支持:使用中遇到任何问题或建议,请通过E-mail(question@fastagen.com)与我们的技术支持部门联系,部门的资深分子生物学专家将在2个工作日内给予答复。
性能介绍:
处理菌量 | 1-5ml |
柱容量 | 15μg |
洗脱体积 | 50-100μl |
产量 | 2-5μg/ml菌液 |
纯度 | OD260/280: 1.7-1.9 |
LPS污染 | 极微量 |
特色 | 1. 使用改进的新配方,较之传统的通用配方,减少了产物中SDS的残留,使酶切、测序、转化的成功率得到保证 2. 新配方大大减少了环状卷曲型DNA的产生 3. 使用特色的膜处理技术,有效增加了得率 |
用途 | 适用于大多数分子生物学实验 |
试剂盒组成 : (Catalog no. 220050 50 次)
RNaseA | 200μl (用前将储存管瞬时离心) |
P1液 | 10ml |
P2液 | 10ml |
P3液 | 15ml |
洗液 | 60ml(已加有15ml) |
洗脱液 | 10ml |
内套柱,外套柱 | 50套 |
说明书 | 1份 |
操作流程:
实验操作前请先认真阅读“注意事项”
1. 培养好的菌液1.5-5ml,离心1min收集(1.5ml的eppendorf管加入1.5ml菌液,离心收集,倒掉上清再加入1.5ml菌液,收集,如此反复)。
2. 吸净全部上清,加入200μl P1液及4μl RNase A,充分吹打或振荡散开沉淀,静置2min。
3. 加入200μl P2液,立即温和颠倒混匀5次。静置3-5min,成均一透明液体。
4. 加入300μl P3液,立即温和颠倒混匀10次,出现白色悬浊液。
5. 室温离心10min。将上清直接倒入或吸入内套管,离心1min。
6. 弃去外套管中液体,内套管中加入500 μl洗液,离心1min。再重复此过程洗一次。
7. 取出内套管,弃去外套管中液体,仍然套回内套管,不加洗液,离心1min。
8. 将内套管放入新的eppendorf管中,在膜中央加入洗脱液50-100μl,室温放置1-2min。
9. 离心1min,即获得质粒DNA。
注意事项:
1. 试剂盒室温保存,保质期1年。
2. 离心速度均为12,000rpm-14,000rpm,室温离心(有条件可4℃离心)。以eppendorf 5417离心机为例,12,000rpm=13,362g,其它类型离心机转速应达到相近的g数。
3. 首次使用时可以将RNase A全部加入P1液中摇匀,用后将P1液瓶置4℃保存。
4. 首次使用时在洗液瓶中加入45ml无污染的分析纯无水乙醇,用后拧紧瓶盖。
5. P2液在低温下会析出白色沉淀,37℃加热溶解混匀后使用,对提取没有影响。
6. 按1:500~1:1000比例接菌种体于250ml选择性LB培养基中,37℃培养12~16小时。若想达到最大质粒拷贝效果,应注意:a.培养容器为培养基体积2~4倍;b.细菌密度最终能达到1×109cells/ml(OD600≤4.0);c.起始菌体量与菌体浓度有关:菌体浓度高,起始量低一点; 菌体浓度低,起始量高一点。每一次的菌体范围在50-250ml內;d.细菌培养不要超过16小时,否则细菌会崩溃,引起细菌大量死亡,导致质粒丢失;e.抗生素浓度要正确,确保大肠杆菌含有目的质粒。
7. 个别大肠杆菌RNA含量丰富,最后质粒会含有小量RNA,应当将步骤2、3适当延长静置时间。
8. 加入P2液后温和地翻转颠倒混匀5次,用力振荡会导致基因组DNA片段断裂释出。混匀后放在室温中静置3-5min,以保证样本充分裂解为均匀透明的液体,时间太短将不能保证细菌被充分裂解,时间太长会会导致基因组DNA片段断裂。
9. 加入P3液后要立即温和地翻转颠倒10次,即可保证充分混匀,用力振荡会导致基因组DNA断裂。
10. 步骤5中建议将离心后的上清直接倒入内套管,用移液器吸入上清容易带入少量沉淀物。
11. 裂解上清液加入内套管中离心1min结束后,如管中仍有液体,表明样本超量或裂解不完全导致吸附膜阻塞。处理方案是:a.减少样本量;b.加入P1液后保证裂解充分。
12. 尽量保证在膜中央加入洗脱液50μl-100μl,低于50μl将不能保证吸附膜被充分浸润;室温放置2min可以洗脱绝大部分DNA,如果要增加洗脱率或为大质粒,可置55℃-60℃ 水浴5min,或加入55℃-60℃预热的洗脱液。洗脱液pH<7.0时会明显降低DNA的洗脱效率,而国内实验室用水大多呈偏酸性,自备洗脱液时应当注意。本试剂盒提供的洗脱液为pH7.6(10mM Tris-HCl, 0.1mM EDTA)。
13. 测序用质粒抽提时菌量应大于3ml,洗脱时加入pH>7.0的水50μl,55℃-60℃水浴5min后离心。
14. 提取的DNA可以放在4℃或-20℃保存,长期应在-80℃分装保存,避免反复冻融。