RNA_fast200

 

                 总RNA 极速抽提试剂盒

 

   适用范围：细胞、组织、全血、骨髓、体液、细菌、病毒

 

 

 

保存条件：室温，保质期2年。

 

技术支持：使用中遇到任何问题或建议，请通过E-mail（question@fastagen.com）与我们的技术支持部门联系，部门的资深分子生物学专家将在2个工作日内给予答复。

性能介绍：

 

 

 

样本量	全血10-1,000μl，培养细胞<1×107，组织<30mg，细菌<1×109，体液（尿液、腹水、胸水、脑积液等）根据具体细胞量
试剂	3种（提取细胞浆RNA为4种）
步骤	4步：裂解，吸附，清洗，洗脱
耗时	7-10min
柱容量	200μg total RNA
洗脱体积	25-50μl
得率	>90%
产量	1-5μg/ml全血，100-300μg/1×107细胞，1-6μg/ mg组织，50-200μg/1×109细菌
纯度	OD260/OD280: 1.9－2.1
特点	1.         可能是目前国际上速度最快、步骤最少的总RNA提取方法 2.         获得的RNA质量与Trizol提取相同，但操作更稳定，RNA不易丢失，不同提取批次间变异小，较少发生DNA和蛋白质污染 3.         获得的RNA完整性好，纯度高，得率高，可以满足目前所有的后继实验要求 4.         适用性广，可同时适用于动物组织、细胞、细菌、植物组织等的总RNA提取 5.         可直接处理血清、血浆及其它体液 6.         非常适于临床标本病毒RNA抽提用于RT-PCR检测 7.         生产全线除RNase处理及防护，所有容器及试剂除RNase处理
用途	普通RT-PCR，定量RT-PCR， NASBA，表达芯片分析，cDNA合成，构建cDNA文库，RPA，Northern Blot，mRNA筛选等

 

试剂盒组成：( Catalog no. 220010  50 次)

 

RA1	10ml（仅提取细胞浆RNA时使用）
RA2	30ml
洗液	60ml（已加有15ml）
洗脱液	10ml
内套柱，外套柱	50套
钢网，平皿，研磨棒	需要时另配（提取组织RNA时用）
说明书	1份

 

操作流程：

实验操作前请先认真阅读“注意事项”

 

1． 样本预处理

a．   抗凝全血：离心管中先加入3ml淋巴细胞分离液，在上层小心加上2-3ml抗凝全血，1,500rpm室温离心15min，吸取中间层细胞至1.5ml eppendorf管，加入生理盐水1ml，4,000rpm离心2min，倒去上清，加入生理盐水100μl，充分振荡形成细胞悬液，直至没有细胞团块（重要）；

b．   组织块：剪切成小块后放入平皿（置冰袋上预冷）中的钢网上，加入DEPC处理的PBS或生理盐水（约1ml/30mg组织），用研磨棒将组织研磨挤压过钢网，收集过网悬液，取100μl放入eppendorf管中（也可采用液氮中捣碎或冰浴中匀浆的方法）；

c．   培养细胞：悬浮细胞离心后留下细胞团块和适量上清（100μl/2×10⁶细胞），充分震荡直至没有细胞团块（重要）。取100μl放入eppendorf管中；贴壁细胞消化后处理同上。

d．   采用细胞浆RNA提取方法时，取上述组织研磨液或各类细胞悬液离心（2,000rpm×2min），去除上清后充分振荡致细胞团松散，加入RA1液（100μl/1×10⁷细胞或30mg组织），充分振荡混匀30s，再离心30s，吸取100μl上清液放入新的eppendorf管中；

e．   体液及其它液体性样本：尿液、腹水、胸水、脑积液等根据需要取1-10ml，离心2min，留下沉淀及约100μl上清，充分震荡悬浮沉淀；有时也可以直接取样本100μl；

f．     细菌：培养良好的细菌菌液1ml，离心后留下细菌团块及大约100μl上清，充分振荡悬浮细菌，直至没有细胞团块（重要）。

2． 处理好的样本中，加入RA2液500μl，充分颠倒混匀1min。

3． 将样本裂解物吸入或倒入内套管，离心1min。

4． 弃去外套管中液体，内套管中加入500 μl洗液，离心1min。再重复此过程洗一次。

5． 取出内套管，弃去外套管中液体，仍然套回内套管，不加洗液，离心1min。

6． 将内套管移入新的eppendorf管中，在膜中央加入洗脱液（或pH>7.0的DEPC处理水）25-50μl，室温静置1min，离心1min，获得总RNA。

 

注意事项：

 

1.        试剂盒室温保存，保质期2年。

2.        离心速度均为12,000rpm-14,000rpm，室温离心（有条件可4℃离心）。以eppendorf 5417离心机为例，12,000rpm＝13,362g，其它类型离心机转速应达到相近的g数。

3.        首次使用时在洗液瓶中加入45ml无污染的分析纯无水乙醇，用后拧紧瓶盖。

4.        避免环境中RNA酶污染，操作要戴手套，所有枪头和eppendorf管以DEPC水处理，移液枪保证洁净无RNA酶污染。如果把试剂放在超净台（普通超净台或专用的桌面PCR超净台）中操作，可以有效减少RNA酶污染。

5.        血液抽取后应在4小时内提取RNA。冻存的血液RNA大部分丢失，不能用于提取。如果不能尽快提取，可以先用淋巴细胞分离液分离获得细胞后（包括其它的细胞、组织），保存在RNA保存液（RNAwait）中。如果试剂盒主要用于提取全血或骨髓RNA，建议采用RNAfast1000（全血样本1-2ml）、RNAfast2000（全血样本2-10ml，详细资料请查阅本公司网站www.fastagen.com）。

6.        对细胞量2×10⁶以下，或组织6mg以下，按照上述标准流程操作；对更多量的细胞和组织，有以下两种方案：a. 提取细胞浆RNA（操作流程1d），可以一次处理1×10⁷细胞、30mg组织（甚至更大量）。由于RNA 90%以上存在于细胞胞浆中，因而此方法可以提取获得绝大部分RNA，除有特殊要求提取其它部位RNA的实验外，一般均可选用此方法；b. 按细胞量每2×10⁶，或组织每6mg加入RA2液600μl。例如1×10⁷细胞加入RA2液3000μl，充分颠倒混匀2min，分5次取600μl移入同一内套管离心；或者分取600μl同时加入5支内套管离心。后续提取过程按照上述标准流程操作。

7.        有时实验者发现样本中加入RA2液后，出现白色絮状、丝状沉淀，这是由于加入RA2液前没有充分振荡混匀细胞悬液或细胞量过大，将影响RNA的得率。

8.        样本裂解物加入内套管中离心1min结束后，如管中仍有液体，表明样本超量或裂解不完全导致吸附膜阻塞。处理方案是：a.减少样本量；b.加入RA2液后充分震荡；c.如已发生阻塞又不想放弃此标本，可用加样枪头划破内套管膜的表层，再重新离心1min。

9.        尽量保证在膜中央加入洗脱液，低于25μl将不能保证吸附膜被充分浸润。

10.    洗脱液pH<7.0时会明显降低RNA的洗脱效率，而国内实验室用水大多呈偏酸性，自备洗脱液时应当注意。本试剂盒提供的洗脱液为pH7.6。

11.    如果获得的总RNA出现有明显的基因组DNA污染，表明操作失误，如样本中液体量太多或太少（通常加入100μl），或者RA2液量少于500μl（要求加入500-600μl）。

12.    提取的总RNA置于4℃或冰浴中，立即用于下游实验（如RT-PCR）；或立即置于-80℃冰箱保存，数天内尽快使用。无论采用何种方法提取和保存的RNA，都往往会被很快降解，因而建议避免提取RNA后保存。